目的：为了获得能高效表达同种肿瘤的刺激分子的同种肿瘤细胞与鼠的DC融合细胞株，并分析融合细胞的生物学特性和H(22)-DC融合细胞诱导CTL活化的能力。

方法：应用密度梯度离心法从鼠的脾脏分离DC，并根据对培养板的半粘附特性和FcR进行纯化,然后应用GM-CSF and IL-4进行培养。获得大量的DC。然后应用PEG聚已二醇将DC与H(22)进行融合，融合细胞具有CD11c表面分子标记。H(22)-DC细胞MACS分选器进行分选。细胞培养技术，免疫化学枝术，光学显微镜等用来检测体外细胞增殖和形态特征等。作为免疫原，H(22)-DC接种于BALB/C鼠右腋皮下，观察体内肿瘤基因的表达情况，MTT法体内脾脏的CTL的活性。

结果： DC分离后，形成表达CD11c+分子和具有不规则的形态特征，离表达CD80，CD86和CDE54分子。H22细胞是CD11c-的球形且体积较大，不表达CD80，CD86和CD54。H(22)-DC是CD11c+细胞，且具有较大体积，球形，或不规则形态特征，同时也高表达CD80, CD86和 CD54。H(22)-DC是能在体外分裂和增殖的，但相对于H(22)来说，它的增殖活性是明显减弱的，它的增殖曲线比H（22）要平的得多。皮下接种60天后，H(22)-DC在鼠体内未能表现出肿瘤生长，与对照组相比具有差异性(P<0.01)。在输入新的H(22)-DC的小鼠的脾脏内的抗H（22）的CTL是明显高于对照组。

结论： H(22)-DC能够显著刺激特异的小鼠的脾脏内的抗H（22）的CTL的活性，这提 示融合细胞已经获得了抗原递呈功能和表达H（22）特异抗原的功能，而目前尚不能鉴定这些特异的抗原位点。H(22)-DC 能能够诱导抗肿瘤免疫反应，虽然简单的H(22)和DC混合能在一定程度上刺激被肿瘤抑制的CTL的生长与活性，但却不能阻抑肿瘤 的生长。这表明DC疫苗很有可能成为一种有效的肝癌免疫治疗的有效方法。